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Es wurde berichtet, dass mesenchymale Stammzellen (MSCs) eine attraktive Quelle für die Erzeugung transplantierbarer Ersatz-β-Zellen sind.Eine embryonale mesenchymale Vorläuferzelllinie der Maus C3H10T1/2 wurde aufgrund ihres Potenzials zur Differenzierung mehrerer Abstammungslinien als Modell für MSCs erkannt.Der Zweck dieser Studie bestand darin, zu untersuchen, ob C3H/10T1/2-Zellen das Potenzial haben, sich in insulinproduzierende Zellen (IPCs) zu differenzieren.Hier untersuchten und verglichen wir die In-vitro-Differenzierung von Ratten-MSCs und C3H10T1/2-Zellen zu IPCs.Nachdem die Zellen einer IPC-Differenzierung unterzogen wurden, wurde die Expression von Differenzierungsmarkern durch Immunzytochemie, Reverse-Transkriptions-Polymerase-Kettenreaktion (RT-PCR), quantitative Echtzeit-RT-PCR (qRT-PCR) und Western Blot nachgewiesen.Die Insulinsekretion wurde durch einen Enzymimmunoassay (ELISA) bewertet.Darüber hinaus wurden diese differenzierten Zellen in Streptozotocin-induzierte diabetische Mäuse transplantiert und ihre biologischen Funktionen in vivo getestet.Diese Studie berichtet über eine zweistufige Methode zur Erzeugung von IPCs aus C3H10T1/2-Zellen.Unter spezifischen Induktionsbedingungen für 7–8 Tage bildeten C3H10T1/2-Zellen dreidimensionale Sphäroidkörper (SBs) und sekretierten Insulin, während die Erzeugung von aus Ratten-MSCs abgeleiteten IPCs eine lange Zeit (mehr als 2 Wochen) erforderte.Darüber hinaus wurden diese aus C3H10T1/2-Zellen abgeleiteten IPCs in diabetische Mäuse injiziert und verbesserten die Basalglukose und das Körpergewicht und zeigten im Test eine normale Glukosetoleranz.Die vorliegende Studie lieferte ein einfaches und zuverlässiges In-vitro-Modell zur weiteren Untersuchung des Mechanismus, der der IPC-Differenzierung von MSCs und der Zellersatztherapie bei Diabetes zugrunde liegt.